将用于紫苏草试管开花的MS培养基中无机盐含量分别设成1，1/2，1/4和1/8，并在培养基中添加相同的1.0 mg·L-1 6-BA和IAA0.5 mg·L-1激素和30 g·L-1的蔗糖、6.8 g·L-1琼脂粉，pH值调到5.8，每个处理50株。培养温度为25 ℃，每天光照24 h，光照强度2 000 lx。70 d左右统计开花率。

　　1.6 PEG-6000的处理

　　采用1/2 MS为基本培养基，其中添加相同的1.0 mg·L-1 6-BA和IAA0.5 mg·L-1激素和30 g·L-1的蔗糖、6.8 g·L-1琼脂粉，pH值调到5.8，并在上述培养基中分别加入浓度为0%，5%， 10%， 15%的PEG-6000， 将紫苏草的无菌苗接种到上面进行离体开花的诱导。具体培养条件为：培养温度为24 ℃，24 h光照，光照强度2 000 lx。在培养期间观察植株生长情况并随时进行试验记录，在培养70 d时对每个处理进行开花率的统计。

　　2 结果与分析

　　2.1 不同浓度的BA与IAA对紫苏草试管开花的影响

　　紫苏草试管苗在不添加任何激素的培养基处理中虽然能够正常生长但都没有开花现象，说明激素是紫苏草开花的必须条件。但在1.5 mg·L-1 6-BA+0.5 mg·L-1 IAA与0 mg·L-1 6-BA+1.0 mg·L-1 IAA的处理中也没有出现开花现象，这说明紫苏草必须在适合的分裂素与生长素下才能开花。从表1可以看出，在1.0 mg·L-1 6-BA +1.0 mg·L-1 IAA组合培养基上诱导试管开花率最高，达到62%。但在1.0 mg·L-1 6-BA+ 0.5 mg·L-1 IAA组合培养基上诱导试管开花率虽然较低，但在较短时间内即可实现正常开花，IAA虽然能促进试管苗的开花，但会拖延开花时间，分析其原因可能是由于较高浓度的IAA会诱导植株过早生根，从而消耗植株养分，降低开花的速度，导致开花延后，因此在实际生产中应选定适合的IAA浓度。在本试验中，1.0 mg·L-1 6-BA+ 0.5 mg·L-1 IAA组合培养基虽然也产生过早生根现象，但在40 d左右即可达到较高的开花率，因此确定为最适合诱导开花的浓度。

　　2.2 低温处理对紫苏草试管开花的影响

　　适合的低温处理能够提高紫苏草试管开花率，从试验结果可以看出，10 ℃处理的效果明显好于15 ℃处理，15 ℃处理的开花率还略低于正常培养的数值，分析其原因，说明10 ℃处理对植株的生理产生了一定的影响，从而诱发了植株成花机制的运行；从低温处理时间上看，在处理2 d的效果最好，过短或过长都不理想，时间短达不到低温处理的目的，时间过长则造成对植物的伤害，影响植株正常生长。因此在10 ℃处理2 d的情况下，紫苏草试管开花的效果最好。

　　2.3 培养基中无机盐的含量对紫苏草试管开花的影响

　　培养基中无机盐的含量对植物的生长可以起到两方面的影响，一是渗透压的调节，二是对植物营养的影响。从表3的数据可以看出，其对紫苏草离体开花也有影响。从开花率来看，1/2 MS处理获得的开花率最高，而MS最低。说明低渗透压利于试管开花，但过低则开花率下降，分析原因可能是过低渗透压的培养基营养不足，不能很好地满足植物开花需要，因此，应根据具体情况调整培养基的渗透压，如组培苗健壮，营养充足时可进一步降低无机盐用量，从而提高试管开花率。

　　2.4 PEG-6000对紫苏草试管开花的影响

　　PEG-6000能够提高紫苏草试管开花率，几乎每个处理都能达到80%以上。从开花质量来看，在培养基中加入PEG-6000后，植株开始生长健壮，花色鲜艳，但随着培养时间的延长，20 d左右植株生长开始出现不正常，一是生长缓慢，并有个别植株出现萎蔫现象，尤其在较高浓度PEG-6000处理的植株表现突出，分析原因可能是植株在长时间高渗透压作用下出现了生理干旱现象，因此在选择采用PEG-6000来提高植物试管开花效率时，一定要选择好使用浓度和正确的处理时间，否则会导致培养的失败。综上所述，在紫苏草进行试管开花诱导中应采用10%PEG-6000处理，时间为20 d的效果最好。

　　3 讨 论

　　3.1 细胞分裂素对植物离体开花的影响

　　在本试验中，采用植物细胞分裂素6-BA来进行紫苏草的试管开花诱导，毕业论文格式试验结果显示，采用6-BA进行诱导收效显著，说明6-BA对紫苏开花有促进作用，因为植物在进行花芽分化时，细胞分裂素是必不可少的，而6-BA的使用正好补充了其自身激素合成的不足；另外在本试验中，笔者还发现在配合使用一定量的生长素时则更能使开花效率大大提高，这也进一步说明植物在进行分化时，生长素与分裂素在适当的配比下才能发挥作用。

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