摘 要：本研究利用SCoT12引物对8个不同花生品种扩增产物中的一个长度多态性片段SCoT12-800进行克隆和测序分析，该序列登录号为KM200036。结果表明，该片段多态性是由于其含有一段TC简单重复序列（Simple Sequence Repeat， SSR），根据该片段序列，利用Primer 5.0软件设计出一对适合SSR分子标记检测的引物，命名为SCoT12-SSR，该引物的扩增产物大小为164～178 bp，在花生栽培种中可检测到5个等位变异，可用于花生的遗传多样性、品种鉴定、基因定位和遗传图谱的构建等研究。

　　关键词：花生；分子标记；SCoT；SSR

　　中图分类号：S565.2+Q781 文献标识号：A 文章编号：1001-4942（2014）11-0008-05 花生（Arachis hypogaea L.）又名落花生，是我国重要的经济作物和油料作物之一。栽培花生是包含来自于不同野生品种A和B两个基因组的异源四倍体作物[1]。研究表明，单一杂交多倍化以及在育种过程中高频使用少数骨干亲本，使得品种间的遗传基础趋于狭窄，基因组高度保守，遗传多样性降低[2]。因此，了解栽培花生品种间的遗传多样性，开发有效的遗传多样性标记对于花生育种以及种质鉴定都具有重大意义。

　　SSR（Simple Sequence Repeat）又称为微卫星DNA，是指由2～6个核苷酸为基本单位多次串联重复所构成的一段DNA序列。SSR标记技术与目前常用的如RFLP、RAPD、STS、SCAR、SPAR、AFLP等标记技术相比， 具有分布均匀、简单快速、稳定性高、重复性好以及多态性丰富等优点，因此在水稻[3]、玉米[4]、小麦[5]等作物研究中得到了广泛应用。花生SSR分子标记的开发相对缓慢，虽然目前已经公布的花生SSR分子标记数达到了15 518，但只有13.5%～14.5%的分子标记在花生栽培种中具有多态性[6，7]，很难满足现今的科研需求。

　　目标起始密码子多态性（Start Codon Targeted Polymorphism，SCoT）分子标记是由Collard和Mackill[8]开发的一种目标分子标记新技术，该标记依据植物基因中ATG翻译起始位点侧翼序列的保守性，设计单引物对基因组进行扩增，并对扩增产物进行电泳检测。SCoT分子标记技术产生的标记大部分是显性标记（引物结合位点的点突变），但也会产生像RAPD标记技术一样的由于插入-缺失突变引起的长度多态性共显性标记，其产物片段大小在200～2 000 bp之间。SCoT分子标记作为一种新型的分子标记具有操作简便、可在各物种间通用、能有效产生与性状连锁的标记等特点。目前，该标记技术已在水稻、马铃薯[9]等作物中成功应用，在花生中也有报道[10，11]。但由于该技术采用单引物扩增，使其存在扩增条带过多，特别是一些共显性插入-缺失片段由于差异不明显而造成结果不易分析等缺点。

　　本研究利用已公布的SCoT分子标记对8个不同的花生品种进行多态性分析，发现其中一个引物SCoT12扩增产物中的一个片段存在长度多态性差异。测序结果表明该片段包含一段TC重复，并利用该序列成功开发出了一个具有多态性的SSR分子标记。

　　1 材料与方法

　　1.1 试验材料

　　8个供试品种，分别为950527、花育22号、DF12、开农176、开17-15、York-1、Q13-2-1、Q13-21-1。所用供试材料均种植于山东省花生研究所试验基地，并在苗期取健康植株上的无病虫害幼嫩叶片，液氮速冻后于-70℃保存。

　　1.2 试验方法

　　1.2.1 DNA提取及PCR反应 基因组DNA提取采用小量CTAB法，并做了相应改良。SCoT-PCR反应体系及反应程序参照熊发前等[12]报道的方法进行优化。优化后的PCR体系总体积为10 μL，含2×Taq PCR MasterMix[天根生化科技（北京）有限公司]3.75 μL、0.5 μmol/L引物、50 ng基因组DNA。PCR程序为94℃预变性5 min；94℃变性30 s，50℃退火30 s，72℃延伸1.5 min，共35个循环；72℃最后延伸5 min。SSR-PCR反应程序为94℃预变性5 min；94℃变性30 s，57℃退火30 s，72℃延伸30 s，共35个循环；72℃最后延伸5 min。SCoT-PCR使用SCoT12引物[11]，SSR-PCR使用根据测序结果开发的SCoT12-SSR引物（引物序列见表1）。

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