将无菌叶片、叶柄接入不同激素配比的培养基中，诱导结果见表。在诱导愈伤过程中，诱导启动时间差距较小。叶片外植体接种5～7 d，叶片边缘翘起，4 d时愈伤组织启动明显，具叶脉的切口处是最易诱导的部位。叶片外植体诱导出淡黄色的愈伤组织，质地坚实。诱导效果随2，4-D浓度的升高而增强，当2，4-D浓度达0 mg/L时，叶片外植体诱导率较高。在一定范围内，叶片愈伤组织的诱导率随6-BA浓度增加而提高。当2，4-D浓度达05 mg/L时，叶柄外植体诱导率较高，说明叶柄外植体对2，4-D的诱导较叶片敏感。当6-BA浓度为2～3 mg/L时，叶柄外植体诱导率随其添加浓度的升高而降低（除2，4-D浓度为0 mg/L处理）。启动叶片愈伤组织发生需要较高浓度的2，4-D、6-BA，激素浓度过高会对继代培养产生激素积累，影响组培苗质量，因此MS培养基添加2，4-D 05 mg/L6-BA 30 mg/L 为叶片愈伤组织最佳诱导培养基；叶柄最适诱导愈伤组织培养基为MS培养基添加05 mg/L 2，4-D20 mg/L 6-BA。
2激素浓度对小块茎诱导的影响
将愈伤组织再分化诱导产生小块茎，接种后3～5 d即可观察到愈伤组织有分化迹象，0 d左右即可分化出多个明显的小块茎，25 d左右小块茎数量保持稳定。诱导产生的小块茎数量在一定范围内随6-BA浓度的升高而增加。但当 6-BA 浓度高于2 mg/L时，诱导小块茎数量有下降趋势（除05 mg/L NAA处理）。因此最适激素比例为添加2 mg/L 6-BA（表2）。
23激素浓度对泰半夏丛生芽诱导生根的影响
分化产生的小块茎在原培养基中继续培养，待丛生苗长至3～5 cm时，接入/2MS0%活性炭并添加不同浓度NAA的生根培养基中进行培养。2 d后观察结果，/2MS0%活性炭05 mg/L NAA培养基产生的根较粗壮、浓密。未添加任何生根剂的对照处理在接种7 d后块茎边缘同样产生了较细弱的根系，但是启动时间晚，延长了培养周期，且根系细弱，不利于移栽（表3）。
24移栽基质对泰半夏组培苗成活的影响
将完整的组培苗移至温室大棚驯化3～5 d后，于岀瓶前 d开盖炼苗。将根部培养基洗净后，栽植于不同的移栽基质中。直接移栽组培苗损失较大，成活率很低。因此，温室炼苗可以极大地提高移栽成活率。由表4可见，D基质处理下泰半夏试管苗移栽成活率最高，且组培苗生长健壮，温室移栽成活30 d后即可移至室外进行大田种植。
3结论与讨论
本研究以叶片、叶柄为外植体，建立了泰半夏工厂化育苗
技术体系（图）。以叶片、叶柄为外植体，愈伤组织最适诱导培养基分别为：MS05 mg/L 2，4-D30 mg/L 6-BA、MS05 mg/L 2，4-D20 mg/L 6-BA；愈伤组织在相同培养基中增殖后诱导小块茎分化的最适培养基为：MS2 mg/L 6-BA。在最适培养基上叶柄形成明显的愈伤组织时间要早于叶片，因此叶柄更适宜作为诱导愈伤组织的外植体。生根苗经温室炼苗个月左右，展开卵圆形的幼叶。5月移栽至室外，缓苗0 d左右，陆续萌出新叶，迅速展开为三出复叶。7月移至大田后，大部分幼叶变黄枯萎，类似倒苗状态。5～7 d卵圆形新叶重新萌出，并很快展开三出复叶。9月移栽至室外林下，原叶未变黄枯萎，7 d左右有新叶萌出，原叶叶色变深。张国泰等发现，在江苏省南京市，半夏于7月中旬到8月中旬全部倒苗越夏，9月重新进入秋季生长季，月上中旬倒苗越冬[2]。因此，泰半夏在冬季大倒苗之前，5—9月皆可以实现移栽入林下或于遮阴地带种植。[FL）]
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